流式實(shí)驗(yàn)中需要使用的新的流式抗體或者對(duì)于抗體使用濃度不太清楚時(shí),就需要進(jìn)行滴度。流式抗體滴定是流式實(shí)驗(yàn)成功、獲得可重復(fù)且準(zhǔn)確數(shù)據(jù)的基石,其主要原理是通過不斷稀釋抗體,找到既能有效結(jié)合目標(biāo)抗原,又能避免非特異性染色的最佳濃度。合理的滴度實(shí)驗(yàn)可以有效的提升信噪比、節(jié)約成本同時(shí)優(yōu)化實(shí)驗(yàn)條件,保證不同實(shí)驗(yàn)條件(如細(xì)胞類型、實(shí)驗(yàn)方案、溫度等)下最佳抗體使用濃度,獲得最佳使用效果。

一、滴定前準(zhǔn)備
確定滴定范圍:
參考抗體說明書或文獻(xiàn)推薦的起始濃度。若無,可從 0.125 µg/test 到 2-4 µg/test 開始(對(duì)于直接標(biāo)記抗體),通常設(shè)置4-6個(gè)梯度。
準(zhǔn)備樣本:
使用與正式實(shí)驗(yàn)相同的樣本類型(如:同種屬的脾細(xì)胞、PBMC、細(xì)胞系等)。
樣本應(yīng)包含明確的陽性群體和陰性群體(用于計(jì)算信噪比)。如果目標(biāo)抗原表達(dá)未知,可用已知陽性和陰性的細(xì)胞系或通過刺激/未刺激樣本對(duì)比。
準(zhǔn)備足夠的細(xì)胞,每個(gè)濃度點(diǎn)至少需要 5×10^5 - 1×10^6 個(gè)細(xì)胞(考慮設(shè)置復(fù)孔和對(duì)照)。
必要對(duì)照:
未染色對(duì)照:只加細(xì)胞,不加抗體。
同型對(duì)照:與滴定抗體相同物種、亞型、標(biāo)記物的非特異性抗體,用于設(shè)置電壓和評(píng)估背景。注意:現(xiàn)代流式更推薦使用熒光減一對(duì)照(FMO) 來設(shè)門,尤其是在多色實(shí)驗(yàn)中。

示例:滴定小鼠抗人CD3-FITC抗體,建議測試濃度:0.125, 0.25, 0.5, 1.0, 2.0 µg/test。
1. 分配細(xì)胞:取5支流式管,每管加入1×10^6個(gè)細(xì)胞(體積一致,如100µL)。
2. 稀釋抗體:將抗體母液按計(jì)劃梯度稀釋至工作液濃度,確保每管加入的體積一致(例如10µL),并用緩沖液(如含1% BSA的PBS)補(bǔ)足體積至相同。
3. 孵育:按照標(biāo)準(zhǔn)染色流程(避光、4°C或冰上孵育15-30分鐘)。
4. 洗滌與重懸:加入2-3mL染色緩沖液,離心棄上清,用300-500µL緩沖液或固定液重懸細(xì)胞,上機(jī)檢測。
5. 設(shè)置儀器:先用未染色對(duì)照調(diào)節(jié)所有通道的電壓,使陰性群體落在對(duì)數(shù)坐標(biāo)軸的10^0-10^1范圍內(nèi)。此后,所有樣本的電壓保持不變!
三、數(shù)據(jù)分析與最適濃度選擇
1. 獲取數(shù)據(jù):記錄每個(gè)濃度下陽性群體和陰性群體的平均熒光強(qiáng)度(MFI)。
2. 計(jì)算關(guān)鍵指標(biāo)(任選其一,推薦染色指數(shù)SI):
信噪比(S/N) = 陽性MFI / 陰性MFI
染色指數(shù)(SI) = (陽性MFI - 陰性MFI) / (2 × 陰性群體的標(biāo)準(zhǔn)差)
SI更客觀,因?yàn)樗紤]了陰性群體的分布寬度。SI值最大時(shí)對(duì)應(yīng)的濃度通常是最優(yōu)濃度。
3. 繪制曲線:以抗體濃度為X軸(對(duì)數(shù)坐標(biāo)),SI或S/N為Y軸,繪制曲線。
曲線會(huì)先快速上升(抗體不足區(qū)),然后進(jìn)入一個(gè)平臺(tái)期(最適飽和區(qū)),最后可能緩慢下降(抗體過量導(dǎo)致背景增高)。
4. 選擇最適濃度:
理想選擇:選擇平臺(tái)期起始點(diǎn)或平臺(tái)期中段的濃度。例如,如果0.5 µg/test時(shí)SI已達(dá)平臺(tái)期最大值,那么1.0 µg/test并未帶來更好分離,就應(yīng)選擇0.5 µg/test作為工作濃度。
實(shí)踐選擇:在平臺(tái)期范圍內(nèi),有時(shí)會(huì)選擇比理論最優(yōu)濃度稍高一點(diǎn)的濃度,以應(yīng)對(duì)樣本間的小幅差異,確保穩(wěn)定性。
四、注意事項(xiàng)
1. 對(duì)于CD3、CD4、CD8這類分群明顯且間隔非常開的指標(biāo),只做細(xì)胞性質(zhì)確定設(shè)門用的時(shí)候,可不進(jìn)行滴定,只滴定那些需要分析比例或MFI的指標(biāo)。
2. 樣本狀態(tài):確保細(xì)胞活性高(>90%),死細(xì)胞會(huì)增加非特異性染色。考慮使用活死染料。
3. 關(guān)于全陽的細(xì)胞的滴定,可以在樣本染色后加入未染色的細(xì)胞;對(duì)于表達(dá)量比較少的稀有細(xì)胞群體,在染色時(shí),可加入該群細(xì)胞的父級(jí)細(xì)胞群的抗體。
4. 緩沖液:使用含蛋白(如BSA)的染色緩沖液阻斷非特異性結(jié)合。
5. Fc受體阻斷:對(duì)于表達(dá)Fc受體的細(xì)胞(如巨噬細(xì)胞、B細(xì)胞等),務(wù)必在染色前進(jìn)行Fc受體阻斷。
6. 記錄與重復(fù):詳細(xì)記錄所有使用的濃度、批號(hào)和實(shí)驗(yàn)條件。新批次抗體必須重新滴定,即使貨號(hào)相同。
7. 固定:如果需要固定細(xì)胞,滴定實(shí)驗(yàn)應(yīng)在固定后進(jìn)行,因?yàn)楣潭ǹ赡苡绊憻晒鈴?qiáng)度。
8. 實(shí)際實(shí)驗(yàn)過程中在一定的細(xì)胞密度范圍內(nèi),抗體的染色指數(shù)只與抗體的濃度有關(guān),與細(xì)胞密度無關(guān)。比如染色體系不變,細(xì)胞增加10倍,可以不用增加抗體濃度。
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