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PCR擴(kuò)增實(shí)驗(yàn)中克隆引物設(shè)計(jì)的原則和步驟

瀏覽次數(shù):947 發(fā)布日期:2025-8-11  來(lái)源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

PCR擴(kuò)增目的基因,膠圖總是一片空白?反復(fù)摸索退火溫度,膠圖全是雜帶?同學(xué),你需要換一對(duì)引物了,一份包教包會(huì)的克隆引物設(shè)計(jì)指南送給你。

引物設(shè)計(jì)的一般原則
設(shè)計(jì)引物需要遵循的原則較多,如引物要有特異性,GC含量在40%-60%之間,Tm值在55-65℃,一對(duì)引物Tm值與GC含量不能相差太多,長(zhǎng)度在16~30 bp為宜,避免一對(duì)引物發(fā)生互補(bǔ),3′端不能選擇A,堿基要隨機(jī)分布等。

基因克隆引物通常由酶切識(shí)別序列和與靶基因互補(bǔ)配對(duì)的特異性序列兩部分組成,特異性序列的靶點(diǎn)在基因CDS序列的兩端,是相對(duì)固定的。因此克隆引物中的可變序列較少,需在盡量不改變特異性序列的條件下,通過(guò)修改酶切識(shí)別序列優(yōu)化引物對(duì)。

兩步學(xué)會(huì)設(shè)計(jì)克隆引物
1.明確載體多克隆位點(diǎn)處限制酶的種類(lèi),并下載目的基因CDS序列。
基因克隆中使用引物一是為了將基因CDS序列從cDNA中大量擴(kuò)增,便于后續(xù)膠回收利用,二是通過(guò)酶切將基因連入載體中用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。因此需在CDS序列中篩選多克隆位點(diǎn)處所有限制酶的識(shí)別序列,選擇載體多克隆位點(diǎn)的限制酶時(shí),應(yīng)避開(kāi)在CDS內(nèi)部存在識(shí)別序列的限制酶,否則會(huì)導(dǎo)致CDS序列被酶切,進(jìn)而連入載體的序列不完整。

若CDS序列內(nèi)含有多克隆位點(diǎn)處所有限制酶識(shí)別序列,則考慮更換載體,若無(wú)法更換載體則可通過(guò)優(yōu)化不完全酶切時(shí)間,獲得酶切的CDS全長(zhǎng)序列,或采用無(wú)縫克隆試劑盒,跳過(guò)酶切步驟。

2. 通過(guò)修改酶切識(shí)別序列優(yōu)化引物對(duì)。
將所有可用的酶切識(shí)別序列分別連接至引物對(duì)5’端,可獲得多對(duì)引物,利用生信軟件分析不同引物對(duì)的GC含量,TM值,序列特異性等信息,獲得評(píng)分較高的引物對(duì)用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

若評(píng)分較高的引物對(duì)還是存在GC含量、TM值相差過(guò)大,特異性不好等問(wèn)題,可以通過(guò)在酶切識(shí)別序列兩端添加1-3bp保護(hù)序列,逐步調(diào)整和優(yōu)化引物對(duì)。

發(fā)布者:山東維真生物科技有限公司
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